Compact Dry SL – pour les bactéries Salmonella – 500 boîtes de test par emballage, 38210000, Japon

Compact Dry SL détecte la salmonelle à l’aide de cultures d’enrichissement préalable de 20 à 24 heures. Les plaques sont basées sur la combinaison de trois principes de test différents :

1. Alcalinisation du milieu, grâce à la capacité de décarboxylase lysine de la Salmonella (la couleur du milieu passe du bleu-violet au jaune)
2. Coloration verte de la colonie, causée par la dégradation du substrat chromogène par une enzyme spécifique de la Salmonella (des colonies noires sont générées par les Salmonella productrices de sulfure d’hydrogène)
3. La motilité de la salmonelle
De plus, les colonies isolées à partir de Compact Dry SL peuvent être utilisées pour la confirmation de la Salmonella. Les bactéries coliformes génèrent un changement de couleur du bleu-violet au rouge-violet par fermentation du lactose et/ou du saccharose dans le milieu. Suivez cette procédure exactement, en particulier la méthode d’inoculation des échantillons et de l’eau stérile, afin de tirer parti des avantages spécifiques de Compact Dry SL.

Durée et température d’incubation : 37 ± 1 °C pendant 18 ± 2 heures et 41,5 ± 1 °C pendant 24 ± 3 heures
Durée de conservation : 12 mois après la fabrication.
Stockage : Température ambiante (1 – 30 °C)

Préparation des appareils et des matériaux
1) Préparez et le milieu stérile fabriqué à partir d’eau peptonée tamponnée (BPW) ou de bouillon EEM avec le numéro d’identification 1000071
2) Sachet d’homogénéisation stérile avec filtre
3) Homogénéisateur
4) Support pour sachet d’homogénéisation
5) Pipette stérile à usage unique (1 ml) ou pipette de mesure stérile
6) Eau stérile
7) Incubateur (36±1 °C et 42±1 °C)

Préparation des échantillons
1) Aliments solides :
Placez 25 g d’échantillon solide dans le sachet d’homogénéisation stérile. Ajoutez 225 ml d’eau peptonée tamponnée stérile ou de bouillon EEM dans le sachet et homogénéisez avec un stomacher pendant environ une (1) minute.
2) Eau ou aliments liquides :
Ajoutez 9 fois le volume d’eau peptonée tamponnée ou de bouillon EEM à l’échantillon liquide. Filtrez l’échantillon liquide à travers le filtre à membrane et placez le filtre dans la bouillon BPW ou EEM.
3) Échantillon desséché :
Ajoutez 9 fois le volume d’eau peptonée tamponnée ou de bouillon EEM à l’ensemble du liquide préparé à partir des échantillons desséchés.
Instructions
1) Les échantillons préparés doivent être conservés dans le sachet d’homogénéisation scellé et le sachet doit être incubé pendant 20 à 24 heures à 35 – 37 °C dans l’incubateur pour l’enrichissement préalable.
2) Retirez le sachet de l’incubateur et frottez le sachet pour l’homogénéiser. Utilisez une pipette stérile à usage unique pour l’inoculation. Déposez délicatement 0,1 ml (3 gouttes avec une pipette de 1 ml) de l’échantillon enrichi sur le disque sec (à environ 1 cm du bord de la plaque). Cette culture enrichie s’arrêtera à un point de dépôt. La diffusion de ce dépôt ne doit pas
atteindre le bord de la plaque.
3) Après l’inoculation de la culture enrichie, déposez délicatement 1 ml d’eau stérilisée au point opposé à celui où l’échantillon a été déposé. L’eau stérilisée se diffuse automatiquement et le disque devient uniformément humide.
4) Retournez la plaque avec son couvercle, placez-la dans un incubateur et incubez pendant 20 à 24 heures à 41 – 43 °C.